|
Стр. 18
количество микобактерий в диагностическом материале, поскольку для
определения лекарственной устойчивости используются штаммы
микобактерий, предварительно выделенные на питательных средах. Так
как сроки выделения возбудителя на питательных средах составляют
не менее 1 - 1,5 месяцев, результаты определения лекарственной
устойчивости указанным методом обычно получают не ранее чем через
2 - 2,5 месяца после посева материала.
При определении лекарственной устойчивости микобактерий на
плотных средах культура считается чувствительной к той
концентрации препарата, которая содержится в среде, если число
колоний микобактерий, выросших на одной пробирке с препаратом, не
7
превышает 20, а посевная доза соответствует 1 x 10 микробных тел.
Культура расценивается как устойчивая к данной концентрации
препарата только при наличии на пробирке с этой концентрацией 20
колоний и более при обильном росте в контрольной пробирке, не
содержащей лекарственного препарата.
В отечественной фтизиатрической практике при определении
лекарственной устойчивости не ограничиваются определением только
критических концентраций. Это связано с тем, что расширенное
определение уровня лекарственной устойчивости возбудителя
позволяет клиницисту варьировать дозировки препаратов и
лекарственные режимы, добиваясь более эффективного воздействия
препаратов за счет допустимого повышения дозы и использования
синергидных и аддитивных свойств различных комбинаций
лекарственных препаратов.
Таблица 9
КОНЦЕНТРАЦИИ ПРЕПАРАТОВ,
ИСПОЛЬЗУЕМЫЕ ПРИ ОПРЕДЕЛЕНИИ ЛЕКАРСТВЕННОЙ
УСТОЙЧИВОСТИ МИКОБАКТЕРИЙ МЕТОДОМ АБСОЛЮТНЫХ
КОНЦЕНТРАЦИЙ НА СРЕДЕ ЛЕВЕНШТЕЙНА-ЙЕНСЕНА
-----------------------------------T-----------------------------¬
¦ Препарат ¦ Концентрации в мкг/мл ¦
+----------------------------------+-----------------------------+
¦ Препараты I ряда ¦
+----------------------------------T--------------T--------------+
¦Стрептомицин ¦ 10 ¦ 25 ¦
+----------------------------------+--------------+--------------+
¦Изониазид ¦ 1 ¦ 10 ¦
+----------------------------------+--------------+--------------+
¦Рифампицин ¦ 40 ¦ 80 ¦
+----------------------------------+--------------+--------------+
¦Этамбутол ¦ 2 ¦ 5 ¦
+----------------------------------+--------------+--------------+
¦ Препараты II ряда ¦
+----------------------------------T--------------T--------------+
¦Канамицин ¦ 30 ¦ 50 ¦
+----------------------------------+--------------+--------------+
¦Протионамид (этионамид) ¦ 30 ¦ 50 ¦
+----------------------------------+--------------+--------------+
¦Циклосерин ¦ 30 ¦ 50 ¦
+----------------------------------+--------------+--------------+
¦Капреомицин ¦ 30 ¦ 50 ¦
+----------------------------------+--------------+--------------+
¦Офлоксацин ¦ 2 ¦ 10 ¦
+----------------------------------+--------------+--------------+
¦ПАСК ¦ 1 ¦ 5 ¦
L----------------------------------+--------------+---------------
6.3.1. Разведение противотуберкулезных препаратов и
приготовление питательных сред
В питательную среду Левенштейна-Йенсена, не содержащую
крахмала (крахмал адсорбирует лекарственные препараты),
непосредственно перед свертыванием добавляют рабочие разведения
различных противотуберкулезных препаратов.
Для приготовления питательных сред с целью определения
лекарственной устойчивости микобактерий должны использоваться
химически чистые субстанции противотуберкулезных препаратов.
ДЛЯ ПРИГОТОВЛЕНИЯ ИЗ ХИМИЧЕСКИ ЧИСТОЙ ПОРОШКОВИДНОЙ ФОРМЫ
ПРЕПАРАТА РАБОЧИХ РАСТВОРОВ, СОДЕРЖАЩИХ НЕОБХОДИМЫЕ ДЛЯ
ИССЛЕДОВАНИЯ КОНЦЕНТРАЦИИ АКТИВНОЙ СУБСТАНЦИИ, РАСЧЕТЫ ПРОИЗВОДЯТ
С УЧЕТОМ ПРОЦЕНТА АКТИВНОСТИ ПРЕПАРАТА.
Активность препарата может варьировать от одной его серии к
другой серии. Сведения об активности приводятся на этикетках или
упаковках лекарственных препаратов и могут быть получены от
компании-изготовителя.
6.3.2. Примеры приготовления питательных сред с препаратами
Для определения лекарственной чувствительности к лекарственным
препаратам в лаборатории должны иметься поверенные весы,
позволяющие производить взвешивание с точностью до 0,2 мг, что
обеспечит точность навески препаратов с погрешностью не более +/-
1,5%.
Стрептомицин
Для определения лекарственной чувствительности к стрептомицину
используют стрептомицина сульфат.
По данным производителя активность стрептомицина сульфата
составляет 750 мг в 1 г чистой субстанции.
Чтобы получить исходный рабочий раствор (А), содержащий в 1 мл
раствора 1 мг активной субстанции, следует:
- (А) приготовить навеску 20 мг стрептомицина сульфата с
точностью до 0,2 мг, что будет соответствовать 15 мг активного
начала, и растворить в 15 мл стерильной дистиллированной воды - 1
мг/мл = 1000 мкг/мл.
Приготовление питательной среды:
Для приготовления 200 мл питательной среды на 40 культур (40
пробирок по 5 мл) на каждое разведение препарата необходимо:
В две стерильные промаркированные колбы (N 1 - 10 мкг/мл, N 2
- 25 мкг/мл) стерильной пипеткой налить последовательно:
- в N 1 - 198 мл среды + 2 мл раствора (А) = 10 мкг/мл;
- в N 2 - 195 мл среды + 5 мл раствора (А) = 25 мкг/мл.
Желательно вначале налить в колбы расчетное количество
раствора А, а затем расчетное количество питательной среды.
Тщательно перемешать содержимое круговыми движениями колбы.
Содержимое каждой колбы разлить в 40 пробирок по 5 мл в каждую,
начиная с колбы N 1. Пробирки поместить в наклонном положении в
аппарат для свертывания, добиваясь равномерной величины косяков
(примерно 8 - 10 см), и проводить процедуру свертывания
питательной среды в обычном порядке.
Изониазид
Активность препарата: в 1 г чистой субстанции содержится 990
мг активного начала = 99%.
Приготовить навеску 20 мг изониазида:
- (А) в 20 мл стерильной дистиллированной воды растворить 20
мг изониазида - 1 мг/мл - 1000 мкг/мл;
- (Б) к 9 мл стерильной дистиллированной воды добавить 1 мл
раствора (А) = 100 мкг/мл.
Приготовление питательной среды:
Для приготовления 200 мл питательной среды на 40 культур (5 мл
x 40) на каждое разведение препарата необходимо:
В две стерильные промаркированные колбы (N 1 - 1 мкг/мл, N 2 -
10 мкг/мл) стерильной пипеткой налить последовательно:
- в N 1 - 198 мл среды + 2 мл раствора (Б) = 1 мкг/мл;
- в N 2 - 198 мл среды + 2 мл раствора (А) = 10 мкг/мл.
Желательно вначале налить в колбы расчетное количество
раствора Б или А, а затем расчетное количество питательной среды.
Перемешивание, разливание и коагулирование производят, как и в
предыдущем случае.
Рифампицин
Активность препарата: в 1 г чистой субстанции - 970 мг
активного начала = 97%.
Взвесить 30 мг порошковидной формы чистой субстанции
рифампицина.
Рифампицин нерастворим в дистиллированной в воде, поэтому
можно предложить нижеприведенную последовательность приготовления
растворов:
Приготовление питательной среды:
На 200 мл питательной среды на 40 культур (5 мл x 40):
Приготовить навеску 30 мг и перенести ее в стерильную пробирку
N 1.
(1) 30 мг RIF + 2,0 мл этанола - 14550 мкг/мл.
Подогреть до Т 35 - 40 -C на водяной бане. Затем, используя
стерильные пробирки:
(А) 2,0 мл раствора (1) + 5,2 H2O - 4000 мкг/мл;
(Б) 2,5 мл раствора (А) + 2,5 мл H2O - 2000 мкг/мл.
Маркируют стерильные колбы N 1 "40 мкг/мл", N 2 "80 мкг/мл":
- в N 1 - 4 мл (Б) + 196 мл среды - 40 мкг/мл;
- в N 2 - 4 мл (А) + 196 мл среды - 80 мкг/мл.
Для ускорения полного растворения препарата допустимо легкое
подогревание на водяной бане до 35 - 40 -C.
Желательно вначале налить в обе колбы расчетное количество
растворов А или Б, а затем последовательно добавить в каждую из
них расчетное количество питательной среды.
Содержимое колб N 1 и N 2 тщательно перемешать круговыми
движениями. Содержимое каждой колбы разлить в 40 пробирок по 5 мл
в каждую, начиная с колбы N 1. Пробирки поместить в наклонном
положении в аппарат для свертывания, добиваясь равномерной
величины косяков (примерно 8 - 10 см), и проводить процедуру
свертывания питательной среды в обычном порядке.
Этамбутол
Активность препарата: в 1 г чистой субстанции - 740 мг
активного начала.
Для определения лекарственной устойчивости используется
этамбутол дигидрохлорид.
(А) приготовить навеску препарата весом 20 мг вещества и
растворить ее в 14,8 мл стерильной дистиллированной воды - 1 мг/мл
= 1000 мкг/мл.
(Б) к 8 мл стерильной дистиллированной воды добавить 2 мл
раствора (А) - 200 мкг/мл.
Приготовление питательной среды:
Для приготовления 200 мл питательной среды на 40 культур (5 мл
x 40) на каждое разведение препарата необходимо:
В две стерильные промаркированные колбы (N 1 "2 мкг/мл", N 2
"5 мкг/мл") стерильной пипеткой налить последовательно:
- в N 1 - 198 мл среды + 2 мл раствора (Б) = 2 мкг/мл;
- в N 2 - 195 мл среды + 5 мл раствора (Б) = 5 мкг/мл.
Желательно вначале налить в обе колбы расчетное количество
раствора Б, а затем последовательно добавить в каждую из них
расчетное количество питательной среды.
Тщательно перемешать содержимое круговыми движениями колбы.
Содержимое каждой колбы разлить в 40 пробирок по 5 мл в каждую,
начиная с колбы N 1. Пробирки поместить в аппарат для свертывания
и проводить процедуру свертывания питательной среды в обычном
порядке.
Канамицин
Активность препарата: в 1 г чистой субстанции канамицина
моносульфата колеблется от 750 до 823 мг активного начала.
Для расчета возьмем величину активности, равную 750 мкг в 1
мг.
Чтобы получить исходный рабочий раствор (А), содержащий в 1 мл
раствора 2000 мкг активной субстанции, следует:
(А) приготовить навеску 30 мг порошковидной формы канамицина
моносульфата = 22,5 мг активного начала и растворить в 11,3 мл
стерильной дистиллированной воды - 2 мкг/мл = 2000 кг/мл.
Для приготовления 200 мл питательной среды на 40 культур (40
пробирок по 5 мл) на каждое разведение препарата необходимо:
В две стерильные промаркированные колбы (N 1 - 30 мкг/мл, N 2
- 50 мкг/мл) стерильной пипеткой налить последовательно:
- в N 1 - 197 мл среды + 3 мл раствора (А) = 30 мкг/мл;
- в N 2 - 195 мл среды + 5 мл раствора (А) = 50 мкг/мл.
Желательно вначале налить в обе колбы расчетное количество
раствора А, а затем последовательно добавить в каждую из них
расчетное количество питательной среды.
Тщательно перемешать содержимое круговыми движениями колбы.
Содержимое каждой колбы разлить в 40 пробирок по 5 мл в каждую,
начиная с колбы N 1. Пробирки поместить в наклонном положении в
аппарат для свертывания, добиваясь равномерной величины косяков
(примерно 8 - 10 см), и проводить процедуру свертывания
питательной среды в обычном порядке.
Протионамид (этионамид)
Оба препарата плохо растворяются в воде.
Активность препарата: в 1 г чистой субстанции - 990 мг
активного начала.
Препарат нерастворим в дистиллированной воде.
(А) приготовить навеску препарата весом 20 мг вещества и
растворить в 3 мл ректифицированного этилового спирта 96- или
диметил-сульфоксида. Добавить к раствору 6,9 мл стерильной
дистиллированной воды - 2000 мкг/мл.
Приготовление питательной среды:
Для приготовления 200 мл питательной среды на 40 культур (5 мл
x 40) на каждое разведение препарата необходимо:
В две стерильные промаркированные колбы (N 1 "30 мкг/мл", N 2
"50 мкг/мл") стерильной пипеткой налить последовательно:
- в N 1 - 197 мл среды + 3 мл раствора (А) - 30 мкг/мл;
- в N 2 - 195 мл среды + 5 мл раствора (А) - 50 мкг/мл.
Желательно вначале налить в обе колбы расчетное количество
раствора А, а затем последовательно добавить в каждую из них
расчетное количество питательной среды.
Тщательно перемешать содержимое круговыми движениями колбы.
Содержимое каждой колбы разлить в 40 пробирок по 5 мл в каждую,
начиная с колбы N 1. Пробирки поместить в аппарат для свертывания
и проводить процедуру свертывания питательной среды в обычном
порядке.
Капреомицин
Содержание активного начала в препарате - 840 мг в 1 г.
РАСТВОРЫ КАПРЕОМИЦИНА ОТЛИЧАЮТСЯ НЕСТАБИЛЬНОСТЬЮ, ПОЭТОМУ ИХ
ГОТОВЯТ НЕПОСРЕДСТВЕННО ПЕРЕД ПРИГОТОВЛЕНИЕМ СРЕД.
Для приготовления 200 мл питательной среды на 40 культур (5 мл
x 40) можно воспользоваться следующей схемой:
Приготовить навеску 20 мг вещества.
(А) 20 мг кампреомицина + 8,4 мл H2O - 2000 мкг/мл.
Колбы N 1 "30 мкг/мл", N 2 "50 мкг/мл":
- в N 1 - 3 мл (А) + 197 мл среды - 30 мкг/мл;
- в N 2 - 5 мл (А) + 195 мл среды - 50 мкг/мл.
Желательно вначале налить в колбы расчетное количество
раствора А, а затем расчетное количество питательной среды.
Перемешивание, разливание и коагулирование производят, как и в
предыдущем случае.
Циклосерин (D-cycloserin)
В 1 г препарата 980 мг активного начала.
Растворы циклосерина отличаются нестабильностью, поэтому их
готовят непосредственно перед приготовлением сред.
(А) приготовить навеску препарата весом 20 мг вещества и
растворить в 9,9 мл стерильной дистиллированной воды - 2 мг/мл =
2000 мкг/мл.
Приготовление питательной среды:
Для приготовления 200 мл питательной среды на 40 культур (5 мл
x 40) на каждое разведение препарата необходимо:
В две стерильные промаркированные колбы (N 1 - 30 мкг/мл, N 2
- 50 мкг/мл) стерильной пипеткой налить последовательно:
- в N 1 - 197 мл среды + 3 мл раствора (А) - 30 мкг/мл;
- в N 2 - 195 мл среды + 5 мл раствора (А) - 50 мкг/мл.
Желательно вначале налить в колбы расчетное количество
раствора А, а затем расчетное количество питательной среды.
Перемешивание, разливание и коагулирование производят, как и в
предыдущем случае.
ПАСК
Активность препарата: в 1 г чистой субстанции - 877,2 мг
активного начала.
Для примера расчета возьмем среднюю величину активности,
равную 880 мг в 1 мг.
Чтобы получить исходный рабочий раствор (А), содержащий в 1 мл
раствора 1,0 мг активной субстанции, следует:
(А) взвесить на электронных или аналитических весах 20 мг
порошковидной формы ПАСК = 17,6 мг активного начала и растворить в
17,6 мл стерильной дистиллированной воды - 1 мг/мл = 1000 мкг/мл;
(Б) к 18 мл стерильной дистиллированной воды добавить 2 мл
раствора А - 100 мкг/мл.
Приготовление питательной среды:
Для приготовления 200 мл питательной среды на 40 культур (40
пробирок по 5 мл) на каждое разведение препарата необходимо:
В две стерильные промаркированные колбы (N 1 "1 мкг/мл", N 2
"5 мкг/мл") стерильной пипеткой налить последовательно:
- в N 1 - 198 мл среды + 2 мл раствора (Б) - 1 мкг/мл;
- в N 2 - 190 мл среды + 10 мл раствора (Б) - 5 мкг/мл.
Желательно вначале налить в обе колбы расчетное количество
раствора Б, а затем последовательно добавить в каждую из них
расчетное количество питательной среды.
Тщательно перемешать содержимое круговыми движениями колбы.
Содержимое каждой колбы разлить в 40 пробирок по 5 мл в каждую,
начиная с колбы N 1. Пробирки поместить в аппарат для свертывания
и проводить процедуру свертывания питательной среды в обычном
порядке.
Офлоксацин
Активность препарата: в 1 г чистой субстанции - 1000 мг
активного начала.
Офлоксацин нерастворим в дистиллированной воде, для его
растворения применяется 0,1 N раствор NaOH. Для этого:
к навеске 0,4 г NaOH добавить 100 мл стерильной
дистиллированной воды = 0,1 N NaOH;
(А) приготовить навеску препарата весом 20 мг вещества и
растворить ее в 20 мл 0,1 N раствора NaOH - 1 мг/мл = 1000 мкг/мл;
(Б) к 12 мл стерильной дистиллированной воды добавить 3 мл
раствора (А) - 200 мкг/мл.
Приготовление питательной среды:
Для приготовления 200 мл питательной среды на 40 культур (5 мл
x 40) на каждое разведение препарата необходимо:
В две стерильные промаркированные колбы (N 1 "2 мкг/мл", N 2
"10 мкг/мл") стерильной пипеткой налить последовательно:
- в N 1 - 198 мл среды + 2 мл раствора (Б) = 2 мкг/мл;
- в N 2 - 190 мл среды + 10 мл раствора (Б) = 10 мкг/мл.
Желательно вначале налить в обе колбы расчетное количество
раствора Б, а затем последовательно добавить в каждую из них
расчетное количество питательной среды.
Тщательно перемешать содержимое круговыми движениями колбы.
Содержимое каждой колбы разлить в 40 пробирок по 5 мл в каждую,
начиная с колбы N 1. Пробирки поместить в аппарат для свертывания
и проводить процедуру свертывания питательной среды в обычном
порядке.
Пиразинамид
Пиразинамид является препаратом, входящим во все схемы
лечения, и обладает бактерицидной активностью в отношении
внутриклеточно расположенных микобактерий. Особенностью препарата
является его высокая противотуберкулезная активность при сниженных
значениях кислотности среды (pH ~= 6,0). В то же время для
культивирования микобактерий туберкулеза на плотных яичных средах
оптимальным является значение кислотности, близкое к нейтральному.
Эти обстоятельства не позволяют использовать стандартные
методики для определения лекарственной устойчивости к пиразинамиду
на плотных яичных питательных средах.
Постановка опытов по определению
лекарственной устойчивости
Непосредственно перед постановкой опыта по определению
лекарственной устойчивости необходимо убедиться в том, что
отобранные для исследования культуры микобактерий не загрязнены
посторонней микрофлорой. Для этого необходимо:
- провести визуальную (макроскопическую) оценку каждой
отобранной культуры, обращая внимание на массивность и характер
роста, однородность колоний, отсутствие загрязнения, цвет
питательной среды;
- провести микроскопию окрашенного по Ziehl-Neelsen мазка из
отобранной культуры с целью определения чистоты культуры и степени
ее кислотоустойчивости.
Проверенные и отобранные для постановки опыта культуры
микобактерий расставить в штативе в порядке номеров.
При любом методе определения чувствительности микобактерий к
противотуберкулезным препаратам каждую серию приготовленной
питательной среды с препаратами необходимо проверить, засевая на
нее заведомо чувствительную культуру микобактерий туберкулеза. Для
контроля можно пользоваться чувствительным штаммом H37Rv или любой
другой многократно проверенной культурой микобактерий туберкулеза,
чувствительной ко всем испытуемым противотуберкулезным препаратам.
Контрольная культура засевается так же, как и испытуемые.
Если среда с препаратами приготовлена правильно, то
контрольная культура не должна расти при тех концентрациях
препаратов, при которых не растут чувствительные к данному
препарату штаммы. Появление роста контрольного штамма в пробирке с
препаратом указывает на то, что при приготовлении среды с
препаратами допущена ошибка, или на то, что неправильно
приготовлена бактериальная суспензия.
При подготовке процедуры исследования необходимо
предварительно:
- занести номера отобранных культур в рабочий журнал;
- расставить в штативы наборы питательных сред с препаратами
для каждой культуры, контрольную пробирку (со средой без
препаратов) и пробирку со средой, содержащей салицилат натрия -
1000 мкг/мл;
- на каждой пробирке со средой написать номер культуры,
название препарата и его концентрацию.
Пример:
-----------------------------------------------------------------¬
¦ Надпись на пробирке ¦
+----------------------T---------T---------T----------T----------+
¦N культуры по журналу ¦203 ¦203 ¦203 ¦203 ¦
¦регистрации ¦ ¦ ¦ ¦ ¦
¦Препарат ¦К ¦NaS ¦Sm ¦Sm ¦
¦Концентрация ¦ ¦ ¦10 ¦25 ¦
+----------------------+---------+---------+----------+----------+
¦Пояснения ¦Контроль ¦Натрия ¦Стрептоми-¦Стрептоми-¦
¦ ¦ ¦салицилат¦цин 10 ¦цин 25 ¦
¦ ¦ ¦ ¦мкг/мл ¦мкг/мл ¦
L----------------------+---------+---------+----------+-----------
Приготовление бактериальной суспензии
Выросшую на плотной питательной среде культуру (обязательно
несколько колоний) снимают платиновой лопаточкой и помещают в
стерильную фарфоровую ступку или толстостенную стеклянную
пробирку. В случае наличия роста на 2 пробирках с разными
питательными средами (Левенштейна-Йенсена и Финна-II) для
приготовления суспензии культуру снимают с обеих пробирок.
Тщательно растирают пестиком или стеклянной палочкой,
постепенно добавляя по каплям стерильный физиологический раствор.
Полученную суспензию отбирают пастеровской пипеткой и переносят в
стерильную пробирку, диаметр которой соответствует диаметру
пробирки с оптическим стандартом мутности. Для осаждения клеточных
конгломератов и стеклянных или фарфоровых частиц густую исходную
суспензию клеток отстаивают в течение 15 минут и переносят в новую
пробирку. После этого суспензию культуры стандартизуют по
оптическому стандарту мутности N 5 (500 млн. микробных тел в 1
мл).
Затем разводят в 10 раз стерильным физиологическим раствором.
Для этого следует заранее приготовить ряд пробирок по числу
исследуемых культур микобактерий и подписать на них номера
исследуемых культур. В каждую пробирку налить по 9 мл стерильного
физиологического раствора. После приготовления суспензий всех
взятых в опыт культур микобактерий и каждую из приготовленных
пробирок внести стерильной пипеткой по 1 мл суспензии
микобактерий, соответствующей стандарту N 5. Получают суспензии с
7
содержанием клеток, соответствующим 5 x 10 микробных тел. Посев
на среды с лекарственными препаратами производить из этих
суспензий.
Процедура исследования:
- полученную бактериальную суспензию набрать в мерную пипетку
объемом 1,0 или 2,0 мл;
- внести по 0,2 мл суспензии в верхнюю 1/3 косяка во все
пробирки с питательной средой, приготовленной для определения
устойчивости культуры данного номера, тщательно сверяя номер
культуры засеваемой суспензии с номерами, написанными на
пробирках. Во избежание ошибок все пробирки, подготовленные для
засева одной культуры, следует расставлять в одном ряду штатива;
- каждую засеянную суспензией пробирку закрыть ватно-марлевой
или дренированной силиконовой пробкой и поставить в вертикальный
штатив с тем, чтобы суспензия равномерно распределялась по
поверхности косяка среды к дну пробирки;
- использованную для засева пипетку опустить в емкость с
дезинфицирующим раствором;
- по завершении засева всех суспензий засеянные пробирки
переместить в горизонтальные штативы - "диваны" и поместить в
термостат при температуре 37 -C; при этом поверхность косяка
питательной среды должна находиться в горизонтальной плоскости, а
наклон штатива должен исключить смачивание пробки материалом
засева;
- по истечении 2 - 3 суток инкубации ватно-марлевые пробки
заменить резиновыми или недренированными силиконовыми;
- после этого засеянные пробирки перевести в вертикальное
положение;
- инкубирование проводить в течение 3 - 4 недель при
обязательном еженедельном просмотре.
Оценка результатов
Результат определения лекарственной устойчивости учитывают на
21 день после посева. При скудном росте в контрольной пробирке все
пробирки с препаратами оставляют еще на 1 - 2 недели в термостате
до получения выраженного роста в контроле, после чего выдают
окончательный ответ. Культуру считают чувствительной к данной
концентрации препарата, если в пробирке со средой, содержащей
препарат, выросло менее 20 колоний при обильном росте в
контрольной пробирке. Культура считается устойчивой к той
концентрации препарата, которая содержится в данной пробирке, если
в пробирке со средой выросло более 20 колоний при обильном росте в
контроле.
6.4. Альтернативные методы определения
лекарственной устойчивости микобактерий
Существует несколько методов определения лекарственной
устойчивости микобактерий. Практически все они основаны на
культивировании микобактерий на плотных (яичные или агаровые) или
жидких питательных средах и осуществляются как прямой или непрямой
метод определения лекарственной устойчивости (см. выше).
При прямом методе на ряд питательных сред, содержащих и не
содержащих определенные концентрации лекарственных препаратов,
засевается обработанный гомогенизирующими и обеззараживающими
средствами обогащенный при центрифугировании осадок
диагностического материала.
При непрямом методе на ряд питательных сред, содержащих и не
содержащих определенные концентрации лекарственных препаратов,
засевается суспензия чистой культуры микобактерий, выращенной на
плотной яичной или агаровой среде. Аналогичным образом может
исследоваться культура, выращенная на жидкой питательной среде
(7Н9 бульон) и соответствующим образом дозированная.
Как указывалось выше, в международной практике используются
преимущественно 4 метода:
- метод пропорций на среде Левенштейна-Йенсена или на среде
Миддлбрука 7Н10;
- метод абсолютных концентраций на плотной яичной среде
Левенштейна-Йенсена;
- метод коэффициента резистентности;
- радиометрический метод Bactec R 460.
6.4.1. Прямой метод абсолютных концентраций
Наряду с непрямым определением лекарственной устойчивости
микобактерий в ряде случаев при наличии у больного массивного
бактериовыделения (значительное или умеренное количество
микобактерий - см. таблицу 3), выявляемого при микроскопическом
исследовании мазка нативного материала или осадка, можно
использовать метод прямого определения лекарственной устойчивости.
В таких случаях производится прямой посев осадка обработанного
детергентами диагностического материала на набор питательных сред
с противотуберкулезными препаратами. Параллельно, чтобы не
упустить возможность выделения культуры микобактерий, обязательно
производится посев материала на стандартные питательные среды.
Метод прямого определения лекарственной устойчивости может (в
случае положительного результата) значительно ускорить получение
ответа о лекарственной устойчивости возбудителя. Однако следует
иметь в виду, что при его выполнении (в отличие от непрямого
метода) производится недозированный засев микобактерий, что
значительно затрудняет интерпретацию результатов.
6.4.2. Метод пропорций
Метод основан на сравнении числа микобактерий выделенной
культуры, выросших в отсутствии препарата и в его присутствии в
критических концентрациях. Для этого приготовленную, как описано
выше, суспензию микобактерий, содержащую 1 мг/мл влажного веса
-4 -6
микобактерий, разводят до концентрации 10 и 10 . Оба разведения
суспензии засевают на питательную среду без препарата и на набор
сред с разными препаратами. Если на среде с препаратом вырастают
колонии, составляющие более 1% от числа выросших на среде без
препарата, культура считается устойчивой к данному препарату. Если
количество КОЕ, устойчивых к данному препарату, менее 1%, культура
считается чувствительной.
6.4.3. Метод коэффициента резистентности
Этот метод основан на определении соотношения минимальной
ингибирующей концентрации (МИК), определяемой для данного штамма
конкретного больного, к МИК лекарственно-чувствительного
стандартного штамма H37Rv, испытываемых в одном и том же
эксперименте. В данном случае штамм H37Rv используется не для
контроля опыта, а для определения возможных вариаций при
постановке теста. С этой точки зрения данный метод является
наиболее точным из трех вышеперечисленных, однако в силу
необходимости использовать большое количество пробирок с
питательной средой он является и наиболее дорогим. Последнее
обстоятельство резко ограничивает его применение.
Кроме описанных выше классических методов культивирования
микобактерий туберкулеза на плотных питательных средах, в
настоящее время нашли свое применение следующие системы
культуральной диагностики микобактерий и определения лекарственной
устойчивости.
Полуавтоматизированная радиометрическая система для выявления
микобактерий в диагностическом материале и определения
лекарственной устойчивости к основным противотуберкулезным
препаратам. Для роста микобактерий в системе используются флаконы
с жидкой питательной средой, которая представляет собой
14
обогащенную бульонную основу, содержащую C - меченый субстрат.
По мере роста микобактерий утилизируют меченый субстрат и выделяют
14
радиоактивный углекислый газ C O2 в пространство над средой во
флаконе. В процессе тестирования газ автоматически забирается из
флакона, уровень радиоактивности измеряется и регистрируется в
виде индекса роста по шкале от 0 до 999. Результат посева
считается положительным, если индекс роста превышает заданный
порог. Ежедневное изменение индекса роста пропорционально степени
роста микобактерий туберкулеза в среде. Наличие роста микобактерий
может быть зафиксировано начиная с 4 - 5 суток от момента посева,
учет результатов производят в течение 6 недель.
Для выделения микобактерий и определения лекарственной
устойчивости может быть использована система с индикацией роста по
флюоресценции в ультрафиолетовом свете. Пробирки с индикатором
роста содержат модифицированный бульон. В пробирки с питательной
средой вносят обогатитель и смесь антибиотиков, подавляющую рост
посторонней микрофлоры. Встроенный в силикон дна пробирок
флюоресцентный компонент чувствителен к присутствию кислорода,
растворенного в бульоне. Высокие начальные концентрации
растворенного кислорода гасят эмиссию этого вещества, и
регистрируется очень низкий уровень флюоресценции. Позднее активно
размножающиеся микобактерии поглощают кислород, что позволяет
наблюдать более интенсивную флюоресценцию при использовании
ультрафиолетового трансиллюминатора. Рост также может быть
зафиксирован по наличию негомогенной замутненности - мелких зерен
или хлопьев в культуральной среде. Учет результатов производится в
течение 8-ми недель от момента посева. Для определения
лекарственной устойчивости требуется от 3-х до 14-ти дней.
ВО ВСЕХ СЛУЧАЯХ ИССЛЕДОВАНИЯ ЛЕКАРСТВЕННОЙ РЕЗИСТЕНТНОСТИ
ПОЛОЖИТЕЛЬНЫЙ РЕЗУЛЬТАТ АНАЛИЗА ДОЛЖЕН ОБЯЗАТЕЛЬНО ПОДТВЕРЖДАТЬСЯ
ПРИ КОНТРОЛЬНОМ МИКРОСКОПИЧЕСКОМ ИССЛЕДОВАНИИ НА НАЛИЧИЕ
КИСЛОТОУСТОЙЧИВЫХ БАКТЕРИЙ И ОТСУТСТВИЕ РОСТА ЗАГРЯЗНЯЮЩЕЙ
МИКРОФЛОРЫ.
Метод, основанный на технологии колориметрического
детектирования продукции CO2 как продукта метаболизма субстратов
среды развивающимися в ней микроорганизмами. Он обеспечивает
уровень чувствительности, ранее достижимый только с помощью
радиометрических методик, при высоком уровне безопасности,
сокращении времени анализа и трудозатрат.
Система включает флаконы с питательной средой и реагенты,
детекторно-инкубационные модули и компьютерную систему учета. В
системе используется питательная среда с добавками факторов роста.
Система совмещает 3 функции: выделение микроорганизмов из крови;
выделение микобактерий из различного диагностического материала;
проверка стерильности.
Последняя разработка, используемая для определения
лекарственной чувствительности микобактерий к критическим
концентрациям 5 противотуберкулезных препаратов (стрептомицин,
изониазид, рифампицин, этамбутол и пиразинамид), основана на
сочетании агарового метода пропорций с радиометрическими методами,
использующими жидкие питательные среды.
Приложение N 12
к Приказу Минздрава России
от 21 марта 2003 г. N 109
РЕКОМЕНДАЦИИ
ПО ПРОТИВОЭПИДЕМИЧЕСКИМ МЕРОПРИЯТИЯМ
В ОЧАГАХ ТУБЕРКУЛЕЗА
I. ОБЩИЕ ПОЛОЖЕНИЯ
В условиях роста заболеваемости туберкулезом и увеличения
числа скрытых источников инфекции меняется медико-социальный
статус бактериовыделителей. Клиническая и социальная отягощенность
источников инфекции повышает риск заражения в очагах туберкулеза.
Этому способствует и нарастание в последние годы агрессивных
свойств возбудителя - высокой вирулентности, лекарственной
устойчивости. Высокую эпидемическую опасность источников инфекции
подтверждает высокая заболеваемость туберкулезом лиц, общавшихся с
бактериовыделителями, в первую очередь - детей и подростков, в
десятки раз превышающая таковую среди всего населения.
Комплекс противоэпидемических мероприятий в очагах туберкулеза
основан на использовании современных критериев для характеристики
очагов и дифференцированном подходе к проведению
противоэпидемических мероприятий в них на различных территориях с
учетом особенностей очагов антропонозного и зоонозного
происхождения. Предлагаемую систему организации и содержания
противоэпидемических мероприятий в очагах туберкулеза
целесообразно применять для унификации деятельности всех
специалистов страны, участвующих в проведении эпидемиологического
обследования очагов и реализации мер по их оздоровлению.
Место пребывания источника микобактерий туберкулеза вместе с
окружающими его людьми и обстановкой в тех пределах пространства и
времени, в которых возможно возникновение новых заражений и
заболеваний, именуется эпидемическим очагом туберкулеза (далее -
очаг туберкулеза).
Источниками микобактерий туберкулеза являются больные люди и
животные, выделяющие во внешнюю среду возбудителей человеческого
вида (антропонозный туберкулез) или бычьего вида (зоонозный
туберкулез). Если заболевание вызвано нетуберкулезными
микобактериями, его относят к микобактериозам.
По степени эпидемической опасности источники микобактерий
туберкулеза неоднородны. Целесообразно выделять несколько
категорий больных, в окружении которых должен проводиться комплекс
противоэпидемических мероприятий.
Основную наиболее опасную для окружающих и многочисленную
категорию источников инфекции составляют больные активным
туберкулезом органов дыхания, у которых выделение возбудителя
установлено любым из обязательных при обследовании методов
(бактериоскопия, посев).
Источниками инфекции являются и больные активным туберкулезом
органов дыхания без установленного указанными методами
бактериовыделения. Ввиду выделения незначительного количества
микобактерий они опасны в основном для высоковосприимчивых детей,
подростков и других лиц со сниженным иммунитетом.
Очаги туберкулеза формируют также больные внелегочными
локализациями процесса, которые выделяют возбудителя через
свищевые ходы, с мочой, испражнениями, выделениями из полости
матки и влагалища и менструальной кровью. Эти больные представляют
меньшую эпидемическую опасность для окружающих, чем больные
туберкулезом органов дыхания.
Животные создают особую категорию источников микобактерий.
Эпидемические очаги туберкулеза имеют пространственные и
временные границы. В пространственные границы антропонозного очага
входят жилище больного, место его работы, обучения, воспитания,
лечения, а также коллективы и группы людей, с которыми он общается
постоянно, периодически или временно. Очагом может оказаться
квартира, дом, общежитие, учреждение социального обеспечения,
детское учреждение, лечебно-профилактическое учреждение,
подразделение предприятия, весь небольшой населенный пункт
(деревня, поселок), если его жители тесно общаются между собой.
Временные границы существования очага включают два срока: весь
период общения с источником микобактерий и продолжительность
инкубации у контактных. Вероятность повышенной заболеваемости
контактных в очаге сохраняется еще год после снятия больного с
бактериологического учета.
Опасность больного туберкулезом как источника инфекции и риск
возникновения в очагах новых заболеваний зависят от следующих
основных факторов:
- локализации процесса у больного, так как поражение органов
дыхания формирует наиболее мощный аэрогенный механизм передачи
возбудителя, сопровождающийся интенсивным обсеменением очага;
- массивности выделения больным микобактерий, их
жизнеспособности, лекарственной устойчивости и вирулентности;
- качества выполнения больным и контактными лицами
противоэпидемического режима;
- наличия в окружении больного детей, подростков, беременных
женщин и других лиц с повышенной восприимчивостью к туберкулезной
инфекции;
- характера жилища (общежитие, коммунальная или отдельная
квартира, индивидуальный дом, учреждение закрытого типа),
определяющего возможность изоляции больного, теснота общения с
контактными, их количество, а также уровня санитарно-коммунального
благоустройства жилища (горячее и холодное водоснабжение и т.д.);
- социального статуса больного, влияющего на невыполнение
режима терапии и противоэпидемического режима в очаге.
Конкретное сочетание указанных факторов и различный уровень их
выраженности и определяют степень эпидемической опасности очага.
В различных коллективах, группах населения вследствие
интенсивной миграции населения при значительном количестве
невыявленных источников инфекции могут возникнуть групповые
заболевания туберкулезом. Они могут возникать в детских
коллективах, по месту работы, учебы, в учреждениях социального
обеспечения, лечебно-профилактических учреждениях с
продолжительным пребыванием больных (психиатрические и др.
учреждения), в небольших относительно изолированных населенных
пунктах, где имеются условия для частого и тесного общения людей.
Данные очаги туберкулеза требуют особенно глубокого, комиссионного
изучения специалистами фтизиатрической и противоэпидемической
служб и разработки с участием администрации учреждения и
администрации населенного пункта плана мероприятий по их
локализации и ликвидации.
Если эпидемический процесс с групповыми заболеваниями
туберкулезом принимает в границах очага затяжной характер, такой
тип процесса относят к эндемическому. В этих случаях в населенном
пункте или коллективе имеются устойчивые условия, способствующие
развитию эпидемического процесса, поэтому требуется комиссионное
обследование очага специалистами. В разработке и реализации плана
противотуберкулезных мероприятий в подобных очагах кроме
фтизиатров и эпидемиологов рекомендуется участвовать администрации
территории или учреждения
II. ОЧАГИ ТУБЕРКУЛЕЗА
Очаги туберкулеза по своей эпидемиологической характеристике
крайне неоднородны (Приложение N 1). В зависимости от риска
возникновения новых заболеваний их следует разделить на 5 групп:
очаги с наибольшим риском заражения туберкулеза, с меньшим риском,
минимальным и потенциальным риском. Особое место среди них
составляют очаги зоонозного типа.
I группа - очаги, сформированные больными туберкулезом органов
дыхания, выделяющими микобактерии туберкулеза (МБТ). В этих очагах
сочетаются все или большая часть неблагоприятных факторов:
проживают дети и подростки, имеют место грубые нарушения больным
противоэпидемического режима, тяжелые бытовые условия. Такие
условия чаще всего встречаются в общежитиях, коммунальных
квартирах, учреждениях закрытого типа, в которых невозможно
выделить для больного отдельную комнату. Это социально отягощенные
очаги. Среди них необходимо выделять "территориальные" очаги
туберкулеза. Территориальный очаг туберкулеза - это квартира, в
которой проживает больной туберкулезом органов дыхания с обильным
бактериовыделением (МБТ определяются методом бактериоскопии мазка
мокроты или дают сплошной рост при посеве на питательные среды),
лестничная клетка и подъезд этого дома и группа близлежащих домов,
объединенных общим двором.
II группа - очаги, в которых проживают больные туберкулезом
органов дыхания, выделяющие МБТ, но проживающие в отдельных
квартирах без детей и подростков, где больной соблюдает
санитарно-гигиенический режим. Это социально благополучные очаги.
III группа - очаги, где проживают больные активным
туберкулезом органов дыхания без установленного при взятии на учет
выделения МБТ, но проживающие с детьми и подростками. Эту группу
очагов формируют также больные с внелегочными локализациями
туберкулеза с выделением МБТ и без выделения МБТ с наличием язв и
|
